海参得了纤毛虫病用什么药好
海参纤毛虫病是海参体长满许多黄绿色或棕色绒毛， 行动不便， 发病数天后大量死亡。病因是由于饲养管理不善， 换水不够， 残饵未清除， 导致水质恶化， 池水中有害藻类和纤毛虫大量繁殖附着海参而引发疾病。防治方法是改变水体环境， 排除旧水， 加注新水， 每次更换池水1/3水量， 每次每亩泼洒生石灰15千克， 连续施用三次， 使池水透明度达到40厘米以上， 也可以用10*10-6（10PPM）福尔马林全池泼洒1-2次。资深海参团队老尹家解答还望采纳， 谢谢
海参纤毛虫怎么防治
高利润高风险！ 海参近几年养殖面积越来越大， 同时寄生虫病害问题也越来越突出。其中盾纤毛虫便是“顽固分子”之一。盾纤毛虫能感染苗期幼参和保苗期的幼参， 全年都可能发生， 一般多发于5-8月， 该病传染率高， 传播快， 处理难度较大， 往往伴随细菌的交叉传染， 可造成稚参、幼参的大批死亡， 一般病原为盾纤毛虫， 也叫嗜腐虫。海参盾纤毛虫病的大规模发生与海参的生存环境条件密不可分， 首先环境条件好， 再加上海参的抗病能力和抗应激能力强， 被传染的几率就小。一、养殖环境1. 养殖用水应经过严格筛滤， 出水口可用300目筛网袋过滤处理后再使用。定期用植物驱虫剂泼洒水体， 减少水体中的盾纤毛虫。2. 及时清除池底和排水沟中的污物， 保持排水沟清洁， 并定期用生石灰等进行消毒。3. 分池倒苗或者更换附着基时， 应避免将收集参苗的网袋与排水沟底部接触， 可使用专用的集苗器， 防止排水沟中有害微生物的交叉污染。同时操作小心谨慎， 避免海参受伤。4. 缩短换板时间间隔， 保持附着基表面的清洁。适时换池， 养殖密度不宜过大， 创造良好的水质环境。二、减少体内纤毛虫1.选用正规饵料， 有条件的经过消毒处理再行投喂。杀灭饵料中的致病菌和纤毛虫等寄生虫病原， 防止“病从口入”。投饵不宜过量， 坚持“四定”原则。2.日常拌料拌服乐畅桉树精油， 1瓶拌料20斤， 每餐投喂， 降低纤毛虫感染几率。其成分桉叶素具有菌虫双抗的作用， 穿透力强， 不伤害海参不伤害水体， 对盾纤毛虫以驱代杀， 配合泼洒效果更佳， 参考量1-2ppm。勤观察勤检查， 早发现早处理， 对病参以及发病池进行隔离消毒。发病初期治愈难度小， 若盾纤毛虫侵入海参组织深处， 出现腐烂化皮严重时则已经回天乏术。发病初期， 可采用调节水温、水质， 配合抗菌药物处理伤口， 同时拌服乐畅1瓶拌料10斤、药浴5g/盆全方面处理， 一般会有明显效果。
怎样培养草履虫,纤毛虫和制作洄水啊,越简单越好.最好不用去采集种源的.
再转一篇《洄水的培养》， 也是用来饲养小鱼苗的草履虫是原生动物的重要代表， 也是初学动物学最先接触的动物。以草履虫为代表的纤毛虫在水质净化及监测上有着十分重要的价值。本实验主要是介绍草履虫的纯化和多种培养方法， 并通过观察， 掌握原生动物的基本特征， 进而更好地理解有关原生动物的其他知识。一、实验准备（一）材料 干稻草、旧稻草垫子、干玉米雄花穗、干荷叶、小麦粒、离芭叶、干酵母、动物内脏（肝、胰、甲状腺等）、蛋黄、牛肉汁（50g牛肉、 100 g水， 煮熟）。（二）用品 显微镜、放大镜、电炉、恒温培养箱、载玻片、盖玻片、滴管、微吸管、解剖针、烧杯、培养皿、凹玻璃片、纱布、吸水纸、大头针、琼胶、质量分数为3％的甲基纤维素溶液、碘液、葡萄糖、氯化钠、质量分数为１％的洋红溶液、质量分数为0．1％的中性红溶液。（三）采集和培养 1．采集 选取多处进行采集。凡是有机物含量丰富的污水， 均可采250～500 mL水样， 当场用放大镜检查。水样镜检， 凡呈乳白色， 个体较大， 圆柱状， 一端稍圆一端稍尖的动物， 就是草履虫。如果多次检查均未发现草履虫， 水样可弃之， 另选别处采集。水样取回， 经显微镜检查， 凡含有草履虫的水样， 要在离水样瓶１０～２０cm处， 放置一盏灯， 经以２４ h照明， 使草履虫向水的上层聚集。 2．培养液制备 制备方法较多， 可根据教学实际进行选用。 （1）稻草培养液 干稻草10g， 剪成3Cm长， 放人烧杯， 加水1000 m1， 煮沸10～15 min， 放凉， 补足失去水分。在１000 mL水面处划一刻度线， 便于日后失水再补。 （2）玉米雄花穗培养液 干玉米雄花穗15 g， 剪成3Cm长， 加水１000 m1， 煮沸10～15 min。 （3）荷叶培养液 干荷叶50 g， 适当撕碎， 加水１000 mL， 煮沸15～20 min。 （4）麦粒培养液 小麦粒１００颗， 加水１０００ mL， 煮沸10～15 min。 （5）离芭、稻草混合培养液 离芭叶25 g， 加水500 m1， 煮沸5 min， 补足失去的水分后， 再加稻草培养液500 m1。 （6）干酵母培养液 市售干酵母0．59， 加水1000 mL， 摇荡均匀后备用。 （7）脏器培养液 动物内脏5g， 剪碎， 加水1000 m1， 浸泡1 d， 滤去内脏与残渣， 留下纯净培养液。 （8）蛋黄培养液 煮熟鸡蛋黄2g， 加水1000 m1， 搅拌均匀。 （9）稻草垫培养液 旧稻草垫， 取其10 g， 剪成3cm长， 加水1000 mL， 再加50g葡萄糖。以上方法中， 第1～8种， 无论培养液煮沸与否均要放进恒温箱， 在25～300C下培养1～2 d， 目的是促使培养液长出细菌， 以便接种草履虫后， 供草履虫索饵。而第9种方法， 既不需煮沸培养液， 又不需接种草履虫， 直接将培养液放进恒温箱培养， 只要稻草上附有草履虫包囊， 当包囊处于适宜条件时， 草履虫就会破囊而出， 进行旺盛的代谢活动， 在5～7 d内大量繁殖起来。 3．培养 下面介绍三种培养方法。 （1）采集的水样经一昼夜照光， 从水面下1Cm处， 在瓶壁上已经形成一圈“白线”的地方， 用微吸管取液。滴一滴到载片上， 经镜检证实水滴中只含草履虫， 无任何其他微型生物时， 就可用一个新的干净滴管吸培养液， 将载片上的草履虫吹人培养瓶中， 放置在25～300C环境中继续培养5～7 d， 草履虫就会大量繁殖起来。 （2）如果水样中混有少量其他微型生物， 可以在载片上先滴一滴牛肉汁， 再滴一滴含有草履虫的水样， 两滴间距2cm左右， 用解剖针从肉汁一端引一条线到含有草履虫的水滴上。两滴连结后， 用放大镜仔细观察， 会发现草履虫对牛肉汁敏感性很强， 草履虫游到牛肉汁滴的速度也快。然后迅速将载玻片放置在显微镜下检查， 在确认牛肉汁滴内尤其他微型生物时， 迅速用吸水纸切断连结线， 用纱布擦干另一侧的水滴， 用于净滴管把含草履虫的牛肉汁吹人培养瓶中。如此重复操作几次， 然后将培养瓶放在25～300C温度下继续培养， 5～7bd后就会有大量草履虫繁殖出来。 （3）如果水样中混杂微型生物的种类与数量过多， 不易排除， 就需要采用逐步扩大法。一般是从水样中取液， 在凹玻片内滴上1～2滴， 放置在显微镜下， 边观察边用微吸管吸走其他微型生物。当凹坑水中无任何其他微型生物而只含草履虫时， 往凹坑放少许培养液， 在25～300C下培养， 每日补加１／３～２／３培养液。如果几天后， 草履虫数量有所增加， 就将其转入表面皿或培养皿， 继续扩大培养。如果再过几天后草履虫纯化培养效果理想， 数量又有所增加， 就要再转入大容器培养液继续培养， 一直到大容器培养液出现云雾状群落， 镜检全是草履虫时为止。 这里特别需要指出的是， 草履虫的培养有可能失败。究其原因很多， 其中有两点是主要的：其一， 可能是接种草履虫的数量过少， 个体质量又较差， 它们进入新环境后， 遇有不适， 很快死去， 未能传宗接代；其二， 可能是稻草之类的材料发霉或残留农药过多， 接种后的草履虫中毒死亡， 不能繁殖。因此， 一旦发现培养液混浊、有特异臭味， 镜检无草履虫， 就要弃之。为避免由于培养失败贻误教学工作， 应多做几瓶培养液， 多选用几种培养方法。4．保种 下面介绍三种保种方法。 （1）培养和观察草履虫的实验一结束， 可将培养液集中在一起， 放置在环境适宜处， 时常滴上1～2滴牛奶（或豆浆）， 再补足失水量。这些水样就是培养新的草履虫的材料， 使用起来十分方便。 （2）也可以将实验所剩培养液， 注入几支试管里， 按1：4比例， 注入新的麦粒浸出液， 管口用脱脂棉封住， 然后将试管捆在一起， 外裹纱布， 竖放在容器内， 就可长期保存。 （3）也可以在所剩培养液的容器上， 加盖一张较厚的洁净的纸， 天长日久， 培养液会逐渐干涸， 只剩干稻草。实验前， 只要向容器里加注凉开水， 搅拌一下， 浸渍ld。用这种浸渍液作接种材料， 放人预制的新培养液里， 在25～300C的环境中培养， 3～5 d后就会有新的草履虫出现。 二、观察草履虫的方法步骤 （一）草履虫对刺激的反应 取一滴清水， 滴到干净载片上。在清水滴旁边滴一滴含草履虫的培养液， 在培养液远离清水滴的边缘放一小条棉纤维， 再在棉纤维未端放一点食盐， 然后用解剖针迅速从清水滴一侧向培养液水滴划去， 将两者连通起来。这时逐步溶解的氯化钠沿着棉纤维桥梁缓缓进入培养液滴中， 草履虫由于受到氯化钠的刺激， 立即产生强烈的回避反应， 一个个向清水滴游去。 （二）草履虫的运动、消化、排泄细胞器的观察 1．第一种方法 在载玻片上， 滴一滴草履虫培养液， 再加一滴质量分数为3％的甲基纤维素液， 用大头针轻轻混匀， 盖好盖片， 虫体由于在较轴稠环境中， 运动受到极大限制， 速度明显减慢， 在低倍镜下很容易找出运动最慢者， 将它移至视野中央， 转换高倍镜进行观察， 会见到虫体呈倒草鞋形， 口沟明显， 周身纤毛缓缓摆动， 胞咽内波动膜急速地运动， 体内有大量的食物泡随着细胞质流动而流动。如果我们紧盯着虫体一端观察， 就会见到放射状的收集管与位于其中间的伸缩泡交替扩张与收缩。用这种方法进行观察， 最好在20 min之内完成， 否则虫体会发生变形崩解， 如未观察完， 需重新制片。 在制片时， 为了能显示出食物泡， 可以在滴好的培养液中， 用玻璃棒蘸少量质量分数为1％的洋红溶液与质量分数为0．１％的中性红溶液与之相混， 静置3～5min， 再加质量分数为3％的甲基纤维素液， 这样制片后镜检就能见到大小不一呈红色的食物泡， 在草履虫体内随细胞质的流动而流动。 2．第二种方法 在载片上， 先将滴加的培养液与染液相混， 将一根略长于载片宽度的头发， 放在液滴右侧， 垂直于载片长边方向放好， 然后盖上盖玻片， 使头发上下两端正好露在载片之外。取一小块吸水纸， 沿着盖片有头发一侧的边缘吸水， 吸到盖片下的水分大多被吸走而又没有出现失水空缺的现象为止。这时， 用左手轻按着盖片， 右手将头发轻轻拉出， 这样载片与盖片通过剩余的极少量水而紧紧地贴在一起。在低倍镜下观察， 就会看到放置头发的位置， 有不少草履虫被阻遏在那里， 并被盖片压成扁平状， 找出其中运动最缓慢者， 转换高倍镜继续观察。（三）大核的观察 滴一滴培养液于载片上， 加少许碘液与之相混， 盖好盖片。在低倍镜下观察， 就会发现被杀死的草履虫的身体中央， 有一个大的肾形结构被染成深褐色， 这就是草履虫的大核。 （四）草履虫接合生殖现象的观察 经研究， 每一种草履虫内存在着不同的繁殖群， 每一个繁殖群内又存在不同的接合型， 只有同一个繁殖群内不同的接合型之间才能发生接合， 进行接合生殖。过去那种将含有生长旺盛的草履虫的培养液， 经离心去掉培养液， 加自来水稀释， 间隔一段时间观察接合生殖现象的方法， 之所以有时观察到的接合生殖率过低， 其主要原因在于它们大多数属于不同的繁殖群， 不会发生接合， 只有少数草履虫属于同一个繁殖群内的不同接合型， 所以观察到的接合生殖现象甚少。为了避免上述接合生殖率过低的现象发生， 就要把多处采来的草履虫， 单独进行纯化培养， 并编号， 勿混。当草履虫旺盛的生长势头达到顶点， 培养液开始出现变清透明的时候， 表明虫体已饱食即要转入饥饿， 这时可将各个培养液一一进行离心， 然后将浓集的草履虫按照序号两两之间进行混合， 放在20～250C环境下， 每隔１h观察一次， 如果发现某组虫体间发生接合， 成对现象较多， 就表明它们是属于同一繁殖群内的两个相对接合型。以后只要将这两个相对接合型虫体各自分开培养， 不断提供充足饵料， 并让它们保持旺盛生长， 就可以随时取样相混合， 草履虫会立即或在数小时之内发生接合生殖再转一篇《洄水的培养》， 也是用来饲养小鱼苗的草履虫是原生动物的重要代表， 也是初学动物学最先接触的动物。以草履虫为代表的纤毛虫在水质净化及监测上有着十分重要的价值。本实验主要是介绍草履虫的纯化和多种培养方法， 并通过观察， 掌握原生动物的基本特征， 进而更好地理解有关原生动物的其他知识。一、实验准备（一）材料 干稻草、旧稻草垫子、干玉米雄花穗、干荷叶、小麦粒、离芭叶、干酵母、动物内脏（肝、胰、甲状腺等）、蛋黄、牛肉汁（50g牛肉、 100 g水， 煮熟）。（二）用品 显微镜、放大镜、电炉、恒温培养箱、载玻片、盖玻片、滴管、微吸管、解剖针、烧杯、培养皿、凹玻璃片、纱布、吸水纸、大头针、琼胶、质量分数为3％的甲基纤维素溶液、碘液、葡萄糖、氯化钠、质量分数为１％的洋红溶液、质量分数为0．1％的中性红溶液。（三）采集和培养 1．采集 选取多处进行采集。凡是有机物含量丰富的污水， 均可采250～500 mL水样， 当场用放大镜检查。水样镜检， 凡呈乳白色， 个体较大， 圆柱状， 一端稍圆一端稍尖的动物， 就是草履虫。如果多次检查均未发现草履虫， 水样可弃之， 另选别处采集。水样取回， 经显微镜检查， 凡含有草履虫的水样， 要在离水样瓶１０～２０cm处， 放置一盏灯， 经以２４ h照明， 使草履虫向水的上层聚集。 2．培养液制备 制备方法较多， 可根据教学实际进行选用。 （1）稻草培养液 干稻草10g， 剪成3Cm长， 放人烧杯， 加水1000 m1， 煮沸10～15 min， 放凉， 补足失去水分。在１000 mL水面处划一刻度线， 便于日后失水再补。 （2）玉米雄花穗培养液 干玉米雄花穗15 g， 剪成3Cm长， 加水１000 m1， 煮沸10～15 min。 （3）荷叶培养液 干荷叶50 g， 适当撕碎， 加水１000 mL， 煮沸15～20 min。 （4）麦粒培养液 小麦粒１００颗， 加水１０００ mL， 煮沸10～15 min。 （5）离芭、稻草混合培养液 离芭叶25 g， 加水500 m1， 煮沸5 min， 补足失去的水分后， 再加稻草培养液500 m1。 （6）干酵母培养液 市售干酵母0．59， 加水1000 mL， 摇荡均匀后备用。 （7）脏器培养液 动物内脏5g， 剪碎， 加水1000 m1， 浸泡1 d， 滤去内脏与残渣， 留下纯净培养液。 （8）蛋黄培养液 煮熟鸡蛋黄2g， 加水1000 m1， 搅拌均匀。 （9）稻草垫培养液 旧稻草垫， 取其10 g， 剪成3cm长， 加水1000 mL， 再加50g葡萄糖。以上方法中， 第1～8种， 无论培养液煮沸与否均要放进恒温箱， 在25～300C下培养1～2 d， 目的是促使培养液长出细菌， 以便接种草履虫后， 供草履虫索饵。而第9种方法， 既不需煮沸培养液， 又不需接种草履虫， 直接将培养液放进恒温箱培养， 只要稻草上附有草履虫包囊， 当包囊处于适宜条件时， 草履虫就会破囊而出， 进行旺盛的代谢活动， 在5～7 d内大量繁殖起来。 3．培养 下面介绍三种培养方法。 （1）采集的水样经一昼夜照光， 从水面下1Cm处， 在瓶壁上已经形成一圈“白线”的地方， 用微吸管取液。滴一滴到载片上， 经镜检证实水滴中只含草履虫， 无任何其他微型生物时， 就可用一个新的干净滴管吸培养液， 将载片上的草履虫吹人培养瓶中， 放置在25～300C环境中继续培养5～7 d， 草履虫就会大量繁殖起来。 （2）如果水样中混有少量其他微型生物， 可以在载片上先滴一滴牛肉汁， 再滴一滴含有草履虫的水样， 两滴间距2cm左右， 用解剖针从肉汁一端引一条线到含有草履虫的水滴上。两滴连结后， 用放大镜仔细观察， 会发现草履虫对牛肉汁敏感性很强， 草履虫游到牛肉汁滴的速度也快。然后迅速将载玻片放置在显微镜下检查， 在确认牛肉汁滴内尤其他微型生物时， 迅速用吸水纸切断连结线， 用纱布擦干另一侧的水滴， 用于净滴管把含草履虫的牛肉汁吹人培养瓶中。如此重复操作几次， 然后将培养瓶放在25～300C温度下继续培养， 5～7bd后就会有大量草履虫繁殖出来。 （3）如果水样中混杂微型生物的种类与数量过多， 不易排除， 就需要采用逐步扩大法。一般是从水样中取液， 在凹玻片内滴上1～2滴， 放置在显微镜下， 边观察边用微吸管吸走其他微型生物。当凹坑水中无任何其他微型生物而只含草履虫时， 往凹坑放少许培养液， 在25～300C下培养， 每日补加１／３～２／３培养液。如果几天后， 草履虫数量有所增加， 就将其转入表面皿或培养皿， 继续扩大培养。如果再过几天后草履虫纯化培养效果理想， 数量又有所增加， 就要再转入大容器培养液继续培养， 一直到大容器培养液出现云雾状群落， 镜检全是草履虫时为止。 这里特别需要指出的是， 草履虫的培养有可能失败。究其原因很多， 其中有两点是主要的：其一， 可能是接种草履虫的数量过少， 个体质量又较差， 它们进入新环境后， 遇有不适， 很快死去， 未能传宗接代；其二， 可能是稻草之类的材料发霉或残留农药过多， 接种后的草履虫中毒死亡， 不能繁殖。因此， 一旦发现培养液混浊、有特异臭味， 镜检无草履虫， 就要弃之。为避免由于培养失败贻误教学工作， 应多做几瓶培养液， 多选用几种培养方法。4．保种 下面介绍三种保种方法。 （1）培养和观察草履虫的实验一结束， 可将培养液集中在一起， 放置在环境适宜处， 时常滴上1～2滴牛奶（或豆浆）， 再补足失水量。这些水样就是培养新的草履虫的材料， 使用起来十分方便。 （2）也可以将实验所剩培养液， 注入几支试管里， 按1：4比例， 注入新的麦粒浸出液， 管口用脱脂棉封住， 然后将试管捆在一起， 外裹纱布， 竖放在容器内， 就可长期保存。 （3）也可以在所剩培养液的容器上， 加盖一张较厚的洁净的纸， 天长日久， 培养液会逐渐干涸， 只剩干稻草。实验前， 只要向容器里加注凉开水， 搅拌一下， 浸渍ld。用这种浸渍液作接种材料， 放人预制的新培养液里， 在25～300C的环境中培养， 3～5 d后就会有新的草履虫出现。 二、观察草履虫的方法步骤 （一）草履虫对刺激的反应 取一滴清水， 滴到干净载片上。在清水滴旁边滴一滴含草履虫的培养液， 在培养液远离清水滴的边缘放一小条棉纤维， 再在棉纤维未端放一点食盐， 然后用解剖针迅速从清水滴一侧向培养液水滴划去， 将两者连通起来。这时逐步溶解的氯化钠沿着棉纤维桥梁缓缓进入培养液滴中， 草履虫由于受到氯化钠的刺激， 立即产生强烈的回避反应， 一个个向清水滴游去。 （二）草履虫的运动、消化、排泄细胞器的观察 1．第一种方法 在载玻片上， 滴一滴草履虫培养液， 再加一滴质量分数为3％的甲基纤维素液， 用大头针轻轻混匀， 盖好盖片， 虫体由于在较轴稠环境中， 运动受到极大限制， 速度明显减慢， 在低倍镜下很容易找出运动最慢者， 将它移至视野中央， 转换高倍镜进行观察， 会见到虫体呈倒草鞋形， 口沟明显， 周身纤毛缓缓摆动， 胞咽内波动膜急速地运动， 体内有大量的食物泡随着细胞质流动而流动。如果我们紧盯着虫体一端观察， 就会见到放射状的收集管与位于其中间的伸缩泡交替扩张与收缩。用这种方法进行观察， 最好在20 min之内完成， 否则虫体会发生变形崩解， 如未观察完， 需重新制片。 在制片时， 为了能显示出食物泡， 可以在滴好的培养液中， 用玻璃棒蘸少量质量分数为1％的洋红溶液与质量分数为0．１％的中性红溶液与之相混， 静置3～5min， 再加质量分数为3％的甲基纤维素液， 这样制片后镜检就能见到大小不一呈红色的食物泡， 在草履虫体内随细胞质的流动而流动。 2．第二种方法 在载片上， 先将滴加的培养液与染液相混， 将一根略长于载片宽度的头发， 放在液滴右侧， 垂直于载片长边方向放好， 然后盖上盖玻片， 使头发上下两端正好露在载片之外。取一小块吸水纸， 沿着盖片有头发一侧的边缘吸水， 吸到盖片下的水分大多被吸走而又没有出现失水空缺的现象为止。这时， 用左手轻按着盖片， 右手将头发轻轻拉出， 这样载片与盖片通过剩余的极少量水而紧紧地贴在一起。在低倍镜下观察， 就会看到放置头发的位置， 有不少草履虫被阻遏在那里， 并被盖片压成扁平状， 找出其中运动最缓慢者， 转换高倍镜继续观察。（三）大核的观察 滴一滴培养液于载片上， 加少许碘液与之相混， 盖好盖片。在低倍镜下观察， 就会发现被杀死的草履虫的身体中央， 有一个大的肾形结构被染成深褐色， 这就是草履虫的大核。 （四）草履虫接合生殖现象的观察 经研究， 每一种草履虫内存在着不同的繁殖群， 每一个繁殖群内又存在不同的接合型， 只有同一个繁殖群内不同的接合型之间才能发生接合， 进行接合生殖。过去那种将含有生长旺盛的草履虫的培养液， 经离心去掉培养液， 加自来水稀释， 间隔一段时间观察接合生殖现象的方法， 之所以有时观察到的接合生殖率过低， 其主要原因在于它们大多数属于不同的繁殖群， 不会发生接合， 只有少数草履虫属于同一个繁殖群内的不同接合型， 所以观察到的接合生殖现象甚少。为了避免上述接合生殖率过低的现象发生， 就要把多处采来的草履虫， 单独进行纯化培养， 并编号， 勿混。当草履虫旺盛的生长势头达到顶点， 培养液开始出现变清透明的时候， 表明虫体已饱食即要转入饥饿， 这时可将各个培养液一一进行离心， 然后将浓集的草履虫按照序号两两之间进行混合， 放在20～250C环境下， 每隔１h观察一次， 如果发现某组虫体间发生接合， 成对现象较多， 就表明它们是属于同一繁殖群内的两个相对接合型。以后只要将这两个相对接合型虫体各自分开培养， 不断提供充足饵料， 并让它们保持旺盛生长， 就可以随时取样相混合， 草履虫会立即或在数小时之内发生接合生殖
